Biokemiska kalkylatorer

Grundläggande biokemiska beräkningar — molekylvikt, omvandling från massa till mol, A260-koncentrationsbestämning, C1V1-spädning, kopietal, proteinets extinktionskoefficient, recept för buffertberedning och enhetsomvandling. Också: Sekvensanalys | Genetikkalkylatorn.

Ange en DNA/RNA-sekvens, en proteinsekvens (enbokstavskod) eller en kemisk formel för att beräkna molekylvikten.

Referenser: A260-omvandlingsfaktorer: dsDNA=50 µg/mL, ssDNA=33 µg/mL, RNA=40 µg/mL per 1,0 OD. Genomsnittlig nukleotidvikt: ~330 Da (dsDNA). Proteinextinktion vid 280 nm: Trp=5690, Tyr=1280, Cys(cystin)=120 M⁻¹cm⁻¹. Buffertrecept baserade på standardprotokoll i molekylärbiologi (Sambrook & Russell).
Vad är en mol — och varför styr den varje panel på den här sidan?

Molekylärbiologi ställer hela tiden en fråga i olika skepnader: hur många molekyler har man egentligen? En våg mäter gram, en spektrofotometer mäter absorbans, en pipett mäter mikroliter — men reaktioner räknar mol, kemisternas enhet för 6,022×10²³ molekyler per mol. Molekylvikten (i dalton, numeriskt samma som g/mol) är växelkursen mellan det man kan väga och det man kan räkna. Varje panel ovan — MW, massa↔mol, OD260, spädning, kopietal, extinktionskoefficient — är ett steg i den växlingen.

Det enda talet att komma ihåg: 1 µg dubbelsträngat DNA med 1000 bp innehåller cirka 9,1×10¹¹ molekyler. Inte ett skrivfel — mängderna man pipetterar är astronomiskt stora på molekylär skala, vilket är varför omvandling mellan massa, koncentration och kopietal är så viktig.
Massa, mol och molaritet

Panelen Massa↔mol dividerar gram med g/mol för att få mol, och dividerar mol med liter för att få molaritet. Ett exempel: 1 mg av ett protein på 50 kDa är 1×10−3 g ÷ 50 000 g/mol = 2×10−8 mol = 20 nmol; löst i 1 mL blir det en 20 µM-lösning. Genomiskt DNA diskuteras ofta i mikrogram, oligos och plasmidpreparat i pmol, och panelen Enhetsomv. växlar mellan alla dessa prefix.

OD260: koncentration utan att väga

Nukleinsyror absorberar UV vid 260 nm enligt Beer–Lamberts lag (absorbans = extinktion × koncentration × väglängd), så en spektrofotometer kan ersätta en våg. För en väglängd på 1 cm motsvarar en absorbansenhet ungefär 50 µg/mL dubbelsträngat DNA, 40 µg/mL RNA eller 33 µg/mL enkelsträngat DNA. Den valfria A280-avläsningen ger en renhetsheuristik: rent DNA ligger nära en A260/A280-kvot på 1,8 och ren RNA nära 2,0; en låg kvot betyder oftast att protein eller fenol följer med. En kvot klart över 1,8 i ett DNA-preparat pekar åt det andra hållet: RNA följer med.

Spädning: C₁V₁ = C₂V₂

Spädningsformeln är bara bevarande av löst ämne: molerna man tar från stocken är lika med molerna man levererar. För att gå från en stock på 100 mg/mL till 10 mg/mL i en slutvolym på 100 mL: V₁ = (10 × 100) / 100 = 10 mL stock plus 90 mL lösningsmedel, en tiofaldig spädning. Panelen Buffertberedning kör samma aritmetik med stockfaktorer på “50×” eller “10×” — för att göra 1 L 1× TAE från en 50×-stock behövs 1000/50 = 20 mL stock.

Kopietal och extinktionskoefficienter

Eftersom varje kopia av en plasmid har samma molekylvikt (cirka 660 Da per basenpar för dubbelsträngat DNA) omvandlas massa till antal molekyler via Avogadros tal: 1 µg av en plasmid på 5000 bp är cirka 1,8×10¹¹ kopior, och 1 pmol av vad som helst är 6,02×10¹¹ kopior. För proteiner förutsäger Edelhoch-metoden absorbans vid 280 nm utifrån bara tre typer av rester: varje tryptofan bidrar med 5690 M⁻¹cm⁻¹, varje tyrosin med 1280 och varje cystin (disulfid) med 120. Ett protein utan aromatiska rester är nästan osynligt för UV — väg det i stället.

Vanliga missuppfattningar
  • “Ett OD på 1 är en exakt konstant.” Faktorerna 50/40/33 µg/mL är empiriska medelvärden för långa polymerer; baskomposition, salt och särskilt korta oligonukleotider förskjuter dem.
  • “660 Da per basenpar är en naturlag.” Det är ett bekvämt medelvärde — DNA rikt på AT och GC skiljer sig något åt, och saltförhållandena spelar roll. Lita inte på mer än två signifikanta siffror.
  • “Ett A260/A280 på 1,6 förstör mitt prov.” Kvoten är en screeningheuristik, känslig för pH och buffert; betrakta den som en flagga, inte en dom.
  • “Kopior och pmol är utbytbara.” De skiljer sig med en faktor 6,02×10¹¹; att blanda ihop dem är ett klassiskt uppsättningsfel i qPCR.

Relaterade verktyg: Molmassekalkylatorn (kemiska motsvarigheten till MW-panelen), Lösningar & spädning, Sekvensanalys och Genetikkalkylatorn.